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Audrey FARBOS

Paris

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En résumé

J'ai réalisé des études en microbiologie et biologie moléculaire à l'Université Paul Sabatier jusqu'en Octobre 2009, date à laquelle j'ai obtenu le Master 2 Professionnel "Diagnostic Microbiologique : approches innovantes".
Durant mes études, j'ai pu faire 2 stages : un au LMGM de Toulouse et un à ECW à Bangor University au Pays de Galles.
Après mes études, j'ai travaillé durant un an au CIRAD de Saint-Pierre (La Réunion) dans l'équipe du Dr. Philippe Prior et du Dr. Isabelle Soustrade-Robène pour le prédéveloppement d'un outil de diagnostic moléculaire de Ralstonia solanacearum.
Depuis, je travaille à l'University of Exeter dans le service de Sequencage.
Je parle également couramment anglais.

Mes compétences :
Clonage
Microbiologie
PCR

Entreprises

  • CIRAD Réunion

    Paris maintenant

  • University of Exeter - Technician

    Exeter 2011 - maintenant - Protocol optimisation and troubleshooting
    - Prepare High throughput libraries for Illumina (manually or using the Agilent Bravo)
    - Run and maintain Illumina instruments (MiSeq and HiSeq 2500)
    - Trained in using MinION and Pacific Biosciences instruments (Sequel and RSII)
    - Train to prepare libraries and to use instruments such as Covaris, Tapestation, Bioanalyzer...
    - Purchase consumables
    - Motivated learner in bioinformatics
    - Accredited First Aider at work

  • CIRAD - Ingénieur d'études en contrat VCAT

    Paris 2010 - 2011 - Sujet d'étude: Pré-développement d’un outil de diagnostic pour la détection de différents groupes de Ralstonia solanacearum
    - Etablissement du cahier des charges de l'outil
    - Choix des gènes spécifiques pour les différents groupes d’intérêts de Ralstonia solanacearum
    - Design d’amorces pour tester les gènes
    - Test par PCR des gènes choisis
    - Regrouper les PCR en multiplex

  • Bangor University - Stagiaire en Microbiologie

    2009 - 2009 Durant mon stage de fin d'année, je suis allée à l'Université de Bangor au Pays de Galles.
    Mon sujet était de comparer 6 méthodes d’extraction indirectes de bactéries afin de trouver laquelle permet une extraction de bactéries optimum à partir du sol. J'ai répondu à cette question pour le nombre de bactéries viables mais également pour l'extraction de pathogènes. Pour cela, j'ai utilisé la bactéries Escherichia coli O157.

  • Laboratoire de Microbiologie et Génétique Moléculaires - Stagiaire en Microbiologie

    2008 - 2008 De Mars à Juin 2008, j'ai réalisé un stage au LMGM de Toulouse dans l'équipe ddu Dr . David Lane.
    Mon sujet était la Mutagénèse ciblée des réplicons de Burkholderia cenocepacia
    Pour cela, differentes expériences ont été realisés :
    - Création de plasmides recombinants necessaires pour la mutagénèse
    - Utilisation de PCR, de transformation bactérienne via un choc éléctrique et d'électrophorèse.
    - Extraction d’ADN par migration, excision de gel puis utilisation de kit

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